第1个回答 2007-10-11
异常血清免疫球蛋白检测方法学探讨(vip资料)
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保健食品检验方法--ig检验
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关于牛初乳及其制品中免疫球蛋白G的检测方法
溶液配制:
1) 缓冲液A: 0.05mol.L-1磷酸二氢钠溶液(pH6.5);
2) 缓冲液B: 0.05mol.L-1甘氨酸溶液(pH2.5);
3)IgG贮液:sigma公司IgG配成浓度约4mg.mL-1溶液,冷冻浓缩至200mL。
样品制备和检测:取一定量牛初乳粉,溶解于缓冲液A,制成浓度2mg/mL的溶液,用0.45mm微滤器过滤后进样。按下表方案使用缓冲液B梯度洗脱。控制不同进样体积(25~200mL)产生标准响应曲线(5mg到70mg)。IgG贮液用缓冲液A稀释后,制成IgG标准曲线(4~40mg)。通过280nm处吸收值监测洗脱液蛋白浓度。
表1 蛋白质G亲合HPLC的梯度洗脱条件
时间(min) 流速(ml/min) %A %B 梯度
0 1.0 100 0 -
0.5 1.0 100 0 -
1.0 2.0 100 0 线性
1.5 2.0 0 100 -
4.0 2.0 0 100 线性
5.0 1.0 100 0 -
7.0 1.0 100 0 -
具体操作可参阅国标GB/T 5009.194- 2003和曹劲松《初乳功能性食品》第10章。
3、 RID与HPLC的比较
一般地,HPLC检测结果将高于RID检测结果。
我们实验室对比研究了牛初乳IgG抗原决定簇部位(或第二抗体结合部位)和蛋白质G结合部位的变性动力学,证实:在实验温度(69℃~81℃)范围内,IgG分子上蛋白质G结合部位在热处理过程中更为耐热,或者说IgG抗原决定簇部位相对更为热敏感。从而,揭示了上述现象的本质:RID测到的IgG在整体变性程度上低于HPLC测到的IgG。因此,国外一些将RID和ELISA方法测定的IgG含量视为“免疫活性IgG”是比较科学的。
在各温度下IgG分子上蛋白质G结合部位变性反应各温度下的D值均比IgG分子上第二抗体结合部位变性反应的相应温度下的D值大,说明IgG分子上蛋白质G结合部位在热处理过程中要比IgG抗原决定簇部位更为耐热。该温度范围内IgG分子上抗原决定簇部位热变性活化能(270.55kJ/moL)大大低于IgG分子上蛋白质G结合部位热变性活化能(316.42kJ/moL)。在该温度范围内IgG分子上第二抗体结合部位变性反应的Z值为9.34℃,IgG分子上蛋白质G结合部位变性反应的Z值为7.25℃,可认为:IgG分子上第二抗体结合部位的稳定性在上述温度范围内相对恒定,而蛋白质G结合部位的稳定性相对容易随温度发生变化。在酸性乳清溶液中,也获得类似的研究结论。
上述研究结果即将发表于《Journal of Agricultural and Food Chemistry》和《Journal of Food Science》。
4、其它
随着未来技术的发展,并不排除其它可能的IgG检测方法。例如ELISA法,国内已经建立,而且有国外公司可提供试剂盒。